全文共 932 字，閱讀大約需要 5 分鐘

摘要：

蛋白質溶液中的聚集被證明會產生有害影響。對較大的聚集體可以進行測量，但對 0.150 納米到 2 微米范圍內的較小聚集體則難以量化。Nicomp® 動態(tài)光散射（DLS）技術可以證明聚集的存在，但不能提供聚集體絕對濃度的任何信息。

生物治療藥物已被證明容易誘發(fā)抗藥抗體（ADA）。有證據(jù)表明，蛋白質聚合體能夠增強免疫原性，從而增強對單體形式蛋白質的免疫反應。

生物治療蛋白質的制造商通常通過一系列步驟制備注射藥物，包括：

1.蛋白質合成和純化

2.冷凍干燥以在運輸過程中保持穩(wěn)定

3.注射前的復配

凍干的好處是可以穩(wěn)定蛋白質以便運輸，但并不清楚凍干蛋白質在重組后是否會恢復到單聚態(tài)。如果在此過程中有少量蛋白質聚集，就有可能誘發(fā)病人對治療過程產生免疫反應。

如果能開發(fā)出一種簡單的方法，在復溶后以大小與濃度直方圖的形式測量聚集程度，就能在配制過程中對這些藥物進行篩選，以確保復溶過程能釋放單體而不產生大量聚集。

圖 1 顯示了對 200 納米處疫苗聚集體的分析。在大約 300 納米處可以清楚地看到聚集。三次運行清楚地顯示了 200 納米處物質的損失，同時 300 納米處的峰值也在增加。

圖 2 顯示，在約 600 納米處也可見聚集。請注意，200 納米處的物質濃度是 600 納米處聚集濃度的十萬倍。

圖 3 顯示了通過改變顯示比例而獲得的更精確的濃度測量結果。從圖中可以看出，疫苗 2 在 600 納米處的聚集物濃度是疫苗 1 的 5 倍。

有了這些信息，我們就可以確定這種疫苗制劑的最佳配制條件，以避免聚集并降低對疫苗產生意外免疫反應的風險。

最后一張圖顯示了另一組分析結果，表明某些蛋白質即使在 5 微米的范圍內也會出現(xiàn)低水平的聚集，而實際濃度相對于天然蛋白質來說可能非常低，以至于無法通過其他方法檢測到。